Microscope NIKON TE 2000 inversé  Laser Scanning Confocal Microscopy  piloté par le logiciel EZ-C1

Objectifs : 20x multi-immersion (eau, huile, glycérol) et 60x à immersion huile

Excitation :		laser Argon, raies d'excitation à  488 nm.
		laser Hélium Néon, raie d'excitation à 543 nm.
		laser Hélium Néon, raie d'excitation à 633 nm.
		surplatine piézo Z

Microscope à épifluorescence

Microscope droit motorisé à épifluorescence (Leica DM 6000B) équipé d’une camera (Photometrics,CoolSNAP) et d’un système d’analyse d’image (MetaVue^TM ). Ce microscope permet la visualisation et l'analyse microscopique de coupes de tissu traitées par les techniques classiquement utilisées dans le cadre des neurosciences (Colorations signalétiques, Immunohistochimie et Immunohistofluorescence, Hybridation in situ, Traçage de voies nerveuses, Histoenzymologie ...).
 

Imageur calcique et Immunofluorescence

Microscope NIKON TE 300 fluorescence par lampe à vapeur de mercure contrôlée par roue porte-filtre (Ex: 340 et 380 nm, em. 520 nm). Objectif 40 x huile Caméra numérique CoolSnapHq  piloté par le logiciel  MetaFluor 6.1
 

Laser à microdissection

Le système de microdissection laser (LMD 6000 ; Leica) est un outil servant à isoler des cellules à l'aide d'un laser à diode UV. Les cellules ou les groupes de cellules peuvent être microdissequés à partir de sections de tissu, de biopsies ou de cultures de cellules. Les échantillons microdisséqués peuvent être alors utilisés en vue d’analyses des protéines ou des acides nucléiques (ADN, ARN) telles que le génotypage, le séquençage, la PCR (classique ou en temps réel), l’électrophorèse sur gel (1D ou 2D) ou la spectrométrie de masse.
 

Chambre d’hypoxie

La chambre d’hypoxie INVIVO2 1000 (Biotrace) permet de réaliser des expériences dans des conditions de culture où la température, la teneur en oxygène (O2) et en dioxyde de carbone (CO2) sont finement contrôlées. En effet, la température de la chambre peut varier de 5°C au dessous de la température ambiante jusqu’à 45°C. Le pourcentage dans l’atmosphère d’O2 et de CO2 est quant à lui contrôlé précisément grâce à des mélangeurs de gaz. Ces derniers permettent notamment de produire une atmosphère dont le pourcentage d’O2 peut être fixé entre 0.1% et 20.9% avec une précision de 0.1%. De plus, constituée de deux enceintes indépendantes l’une de l’autre, cette chambre d’hypoxie offre la possibilité d’effectuer deux expériences différentes simultanément (par exemple, deux pourcentages d’O2 différents ou deux températures différentes).
Cet appareillage permet ainsi de reproduire in vitro les conditions d’une ischémie cérébrale, à savoir, une privation d’oxygène et de glucose. C’est un outil indispensable à la réalisation de modèles d’études qui aideront à mieux comprendre les mécanismes physiopathologiques de l’ischémie cérébrale, et ainsi, à proposer de nouvelles stratégies thérapeutiques de cette pathologie.